Bradford法測定蛋白質(zhì)濃度 (一)實(shí)驗原理 雙縮脲法(Biuret法)和Folin—酚試劑法(Lowry法)的明顯缺點(diǎn)和許多限制,促使科學(xué)家們去尋找更好的蛋 白質(zhì)溶液測定的方法。
1976年由Bradford建立的考馬斯亮蘭法(Bradford法),是根據蛋白質(zhì)與染料相結合的原理設計的。這種蛋白 質(zhì)測定法具有超過(guò)其他幾種方法的突出優(yōu)點(diǎn),因而正在得到廣泛的應用。
這一方法是目前靈敏度最高的蛋白質(zhì)測定 法。 考馬斯亮蘭G-250染料,在酸性溶液中與蛋白質(zhì)結合,使染料的最大吸收峰的位置(?max),由465nm變?yōu)?95n m,溶液的顏色也由棕黑色變?yōu)樘m色。
在595nm下測定的吸光度值A595,與蛋白質(zhì)濃度成正比。 Bradford法的突出優(yōu)點(diǎn)是: (1)靈敏度高,據估計比Lowry法約高四倍,其最低蛋白質(zhì)檢測量可達1?g。
這是因為蛋白質(zhì)與染料結合后產(chǎn)生 的顏色變化很大,蛋白質(zhì)-染料復合物有更高的消光系數,因而光吸收值隨蛋白質(zhì)濃度的變化比Lowry法要大的 多。 (2)測定快速、簡(jiǎn)便,只需加一種試劑。
完成一個(gè)樣品的測定,只需要5分鐘左右。由于染料與蛋白質(zhì)結合的 過(guò)程,大約只要2分鐘即可完成,其顏色可以在1小時(shí)內保持穩定,且在5分鐘至20分鐘之間,顏色的穩定性最好。
因而完全不用像Lowry法那樣費時(shí)和嚴格地控制時(shí)間。 (3)干擾物質(zhì)少。
如干擾Lowry法的K+、Na+、Mg2+離子、Tris緩沖液、糖和蔗糖、甘油、巰基乙醇、EDTA等均不 干擾此測定法。
蛋白質(zhì)含量測定法,是生物化學(xué)研究中最常用、最基本的分析方法之一。目前常用的有四種古老的經(jīng)典方法,即定氮法,雙縮尿法(Biuret法)、Folin-酚試劑法(Lowry法)和紫外吸收法。另外還有一種近十年才普遍使用起來(lái)的新的測定法,即考馬斯亮藍法(Bradford法)。其中Bradford法和Lowry法靈敏度最高,比紫外吸收法靈敏10~20倍,比Biuret法靈敏100倍以上。定氮法雖然比較復雜,但較準確,往往以定氮法測定的蛋白質(zhì)作為其他方法的標準蛋白質(zhì)。
值得注意的是,這后四種方法并不能在任何條件下適用于任何形式的蛋白質(zhì),因為一種蛋白質(zhì)溶液用這四種方法測定,有可能得出四種不同的結果。每種測定法都不是完美無(wú)缺的,都有其優(yōu)缺點(diǎn)。在選擇方法時(shí)應考慮:①實(shí)驗對測定所要求的靈敏度和精確度;②蛋白質(zhì)的性質(zhì);③溶液中存在的干擾物質(zhì);④測定所要花費的時(shí)間。
考馬斯亮藍法(Bradford法),由于其突出的優(yōu)點(diǎn),正得到越來(lái)越廣泛的應用。
定氮法,雙縮尿法(Biuret法)、Folin-酚試劑法(Lowry法)和紫外吸收法。考馬斯亮藍法(Bradford法)。
凱氏定氮 靈敏度低,適用于0.2~ 1.0mg氮,誤差為 ±2% 費時(shí)
8~10小時(shí) 將蛋白氮轉化為氨,用酸吸收后滴定 非蛋白氮(可用三氯乙酸沉淀蛋白質(zhì)而分離) 用于標準蛋白質(zhì)含量的準確測定;干擾少;費時(shí)太長(cháng)
雙縮脲法(Biuret法) 靈敏度低 1~20mg 中速 20~30分鐘 多肽鍵+堿性Cu2+?紫色絡(luò )合物 硫酸銨;Tris緩沖液;某些氨基酸 用于快速測定,但不太靈敏;不同蛋白質(zhì)顯色相似
紫外吸收法 較為靈敏 50~100mg 快速 5~10分鐘 蛋白質(zhì)中的酪氨酸和色氨酸殘基在280nm處的光吸收 各種嘌吟和嘧啶;
Folin-酚試劑法(Lowry法) 靈敏度高 ~5mg 慢速 40~60分鐘 雙縮脲反應;磷鉬酸-磷鎢酸試劑被Tyr和Phe還原 硫酸銨;Tris緩沖液;甘氨酸;
各種硫醇 耗費時(shí)間長(cháng);操作要嚴格計時(shí);顏色深淺隨不同蛋白質(zhì)變化
考馬斯亮藍法(Bradford法) 靈敏度最高 1~5mg 快速5~15分鐘 考馬斯亮藍染料與蛋白質(zhì)結合時(shí),其lmax由465nm變?yōu)?95nm 強堿性緩沖液;
SDS 最好的方法;干擾物質(zhì)少;顏色穩定; 顏色深淺隨不同蛋白質(zhì)變化
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