血漿處理常用方法(調血漿方法)
1.調血漿方法
材料：食用紅色素（食品店里有賣(mài)，一元一包），蜂蜜，溫水
制作方法：在容器中放入適量的食用紅色素加溫水（不要很多，一點(diǎn)點(diǎn)就可以）拌勻，再加入蜂蜜就可以了（適量，自己調配）.效果和真血一樣，可以含在嘴里，涂在牙齒上，脖子上，等身體各個(gè)部位！
血漿有好幾種。
如果是涂在演員皮膚上，而且需要拍景別比較小的鏡頭的話(huà)。這是由化妝部門(mén)負責，但是也不是化妝師調。一般會(huì )用專(zhuān)業(yè)的進(jìn)口血漿，都是小瓶裝的，而且價(jià)格不菲。一般都是局部用一用，而且多半是電影才會(huì )采用這種血漿，制作粗糙的電視劇一般就用紅墨水或者色素加上黏綢劑。
如果大面積的流血，則是由美術(shù)，道具部門(mén)負責。一般都是采用色素加黏綢劑，或者番茄汁加色素。
還有一種是入口的血漿，這種一般是煙火師或者武行來(lái)負責的，這種血漿一般是用食用色素和蜂蜜兌水調制。
大面積流血以及其他一些血多的戲，也有劇組用雞血什么的動(dòng)物血，看情況了。
2.消除血漿蛋白干擾的方法有哪些,各有什么特點(diǎn)
原子吸收分光光度計的干擾及消除方法
(1)物理干擾物理干擾是指試樣在轉移、蒸發(fā)過(guò)程中任何物理因素變化而引起的干擾效應。屬于這類(lèi)干擾的因素有：試液的粘度、溶劑的蒸汽壓、霧化氣體的壓力等。物理干擾是非選擇性干擾，對試樣各元素的影響基本是相似的。 配制與被測試樣相似的標準樣品，是消除物理干擾的常用的方法。在不知道試樣組成或無(wú)法匹配試樣時(shí)，可采用標準加入法或稀釋法來(lái)減小和消除物理干擾。
(2)化學(xué)干擾化學(xué)干擾是指待測元素與其它組分之間的化學(xué)作用所引起的干擾效應，它主要影響待測元素的原子化效率，是原子吸收分光光度法中的主要干擾來(lái)源。它是由于液相或氣相中被測元素的原子與干擾物質(zhì)組成之間形成熱力學(xué)更穩定的化合物，從而影響被測元素化合物的解離及其原子化。 消除化學(xué)干擾的方法有：化學(xué)分離；使用高溫火焰；加入釋放劑和保護劑；使用基體改進(jìn)劑等。
(3)電離干擾在高溫下原子電離，使基態(tài)原子的濃度減少，引起原子吸收信號降低，此種干擾稱(chēng)為電離干擾。電離效應隨溫度升高、電離平衡常數增大而增大，隨被測元素濃度增高而減小。加入更易電離的堿金屬元素，可以有效地消除電離干擾。
(4)光譜干擾光譜干擾包括譜線(xiàn)重疊、光譜通帶內存在非吸收線(xiàn)、原子化池內的直流發(fā)射、分子吸收、光散射等。當采用銳線(xiàn)光源和交流調制技術(shù)時(shí)，前3種因素一般可以不予考慮，主要考慮分子吸收和光散射地影響，它們是形成光譜背景的主要因素。
(5)分子吸收干擾分子吸收干擾是指在原子化過(guò)程中生成的氣體分子、氧化物及鹽類(lèi)分子對輻射吸收而引起的干擾。光散射是指在原子化過(guò)程中產(chǎn)生的固體微粒對光產(chǎn)生散射，使被散射的光偏離光路而不為檢測器所檢測，導致吸光度值偏高。
3.診斷血漿K+濃度異常患者的常用方法有哪些
首先，明確是否存在可引起K+濃度異常的病因： （1） 異常的K+攝入和代謝（分解或合成代謝過(guò)盛）； （2） 細胞內外成分的轉移； （3） 腎臟排泄或腎外異常丟失。
把患者進(jìn)行以上三種分類(lèi)后，鑒別診斷就縮小到很小的范圍，而后制定正確的診斷試驗，執行恰當的處理。因攝入引起的異常可詢(xún)問(wèn)病史，進(jìn)行體檢發(fā)現。
通過(guò)陽(yáng)離子異常的分布可知細胞內外成分的轉移。測量尿K+濃度能幫助鑒別是腎，還是非腎引起的異常。
因腎臟引起K+不足的低鉀血癥，可見(jiàn)顯著(zhù)的尿K+排出增多，而腎外（例如消化道）丟K+所致的低鉀血癥，尿K+排出可見(jiàn)適當的減少。
4.常用的血漿病毒滅活有哪幾種方法
常用的血漿病毒滅活主要有如下方法： ①巴斯德消毒法經(jīng)60°C加熱10小時(shí)。
優(yōu) 點(diǎn)：可滅活各種病毒，安全性強。缺點(diǎn)：熱處理對蛋白損傷較大，特別是凝血因子活性丟失較 多。
有些方法添加穩定劑劑量大，造成輸入總液量大。 ②用有機溶劑/去污劑處理血漿 （Solvent/detergent-treated plasma）即SD滅活血漿病毒。
有機溶劑如乙醚、磷酸三丁醋 （TNBP），去污劑如吐溫80(Tween 80)或Triton X-100。優(yōu)點(diǎn)：大混合統一分裝，同一批中 凝血因子、纖維蛋白原和總蛋白含量相同。
缺點(diǎn)：存在生產(chǎn)污染可能性；血漿原始成分變化， 如von Willebmnd因子等；不能滅活非脂包膜病毒HAV,B19病毒；不能用作血漿容量擴容 劑和蛋白支持療法；蛋白C和蛋白S的損耗大。 ③亞甲藍處理血裝（methylene blue-treatedplasma）血加入亞甲藍結合光照處理滅活血漿病毒。
優(yōu)點(diǎn)：避免血漿大混合有增加傳播病毒 危險性；避免vWF的缺失。缺點(diǎn)：不能滅活非脂包膜病毒如HAV、B19等；單一袋中各種凝 血因子含量及總蛋白含量不同，臨床使用無(wú)準確參考劑量；不能用作血漿擴容劑和蛋白支持 療法。
④壓力循環(huán)技術(shù)（pressure cycling technology） 2000年美國發(fā)表的最新一項血漿 病毒滅活技術(shù)，可以導致病原體多亞基蛋白和蛋白-核酸復合體解離，核酸從病毒顆粒中溢 出。本法對非脂包膜病毒滅活效果較差。
⑤核黃素光化學(xué)法核黃素的核醇結構使其可以 結合到DNA或RNA的核酸鏈上，在紫外或可見(jiàn)光的照射下吸收光子的能量，通過(guò)異咯嗪 上的1,10位氮原子的可逆性氧化還原反應轉移電子，使核酸鏈上的鳥(niǎo)嘌呤殘基斷裂，導致 病原體核酸結構發(fā)生改變，阻斷核酸的復制、轉錄和翻譯。 優(yōu)點(diǎn)：核黃素可以穿過(guò)細胞膜性 結構，故可對包膜病毒和非包膜病毒、細菌均可以有效殺滅。
缺點(diǎn)：血漿凝血因子活性有所 下降。
5.如何制備血清和血漿
血清和血漿均是不含細胞（包括血小板）等有形成分的血液液體部分，其主要區別是血清不含凝血因子和血小板，血漿則含有凝血因子，它們的制備方法如下： 1、血清的制備：獲得的血液不能抗凝，盛于離心管或可以離心的器皿中，靜置或置37℃環(huán)境中促其凝固，待血液凝固后，將其平衡后離心（一般為3000rpm，離心 5~10min），得到的上清液即為血清，可小心將上清吸出（注意切勿吸出細胞成分），分裝備用。
2、血漿制備：在盛血的容器中先加人一定比例的抗凝劑（抗凝劑：血液 = 1:9，將血液加到一定量后顛倒混勻，離心（離心條件同上）后所得的上清液即為血漿。初用者最好將上清移至另一清潔容器，吸出血漿時(shí)用毛細吸管貼著(zhù)液面逐漸往下吸，切忌不能吸起細胞成分。
3、富含血小板血漿制備：將獲得的血液經(jīng)800rpm，離心5min，其上清即為富含血小板血漿。 擴展資料： 鑒別方法 1、血清 血液凝固析出的淡黃色透明液體。
如將血液自血管內抽出，放入試管中，不加抗凝劑，則凝血反應被激活，血液迅速凝固，形成膠凍。凝血塊收縮，其周?chē)龀鲋S色透明液體即為血清，也可于凝血后經(jīng)離心取得。
在凝血過(guò)程中，纖維蛋白原轉變成纖維蛋白塊，所以血清中無(wú)纖維蛋白原，這一點(diǎn)是與血漿最大的區別。 而在凝血反應中，血小板釋放出許多物質(zhì)，各凝血因子也都發(fā)生了變化。
這些成分都留在血清中并繼續發(fā)生變化，如凝血酶原變成凝血酶，并隨血清存放時(shí)間逐漸減少以至消失。這些也都是與血漿區別之處。
但大量未參加凝血反應的物質(zhì)則與血漿基本相同。為避免抗凝劑的干擾，血液中許多化學(xué)成分的分析，都以血清為樣品。
2、血漿 血漿是血液的液體成分，血細胞懸濁于其中。人體含有2750-3300毫升血漿，約占血液總體積的55%。
血漿的絕大部分是水（體積的90%），其中溶解的物質(zhì)主要是血漿蛋白，還包括葡萄糖、無(wú)機鹽離子、激素以及二氧化碳。血漿的主要功能是運載血細胞，同時(shí)也是運輸分泌產(chǎn)物的主要媒介。
將新鮮血液離心，使血細胞沉降，上層淡黃色清液即是血漿。血漿與血清的區別是血清中不含纖維蛋白原等凝血因子。
參考資料來(lái)源：百度百科-血清。
